Везде

ОСХН Российская сельскохозяйственная наука Russian Agricultural Sciences

  • ISSN (Print) 2500-2627
  • ISSN (Online) 3034-5820

ХАРАКТЕРИСТИКА ПЕРСПЕКТИВНЫХ ОБРАЗЦОВ ЯРОВОЙ ТВЕРДОЙ ПШЕНИЦЫ СЕЛЕКЦИИ ФАНЦ ЮГО-ВОСТОКА ПО УСТОЙЧИВОСТИ К ЛИСТОСТЕБЕЛЬНЫМ БОЛЕЗНЯМ

Вы можете
Код статьи
S3034582025040017-1
DOI
10.7868/S3034582025040017
Тип публикации
Статья
Статус публикации
Опубликовано
Авторы
Гапонов С.Н.
  • Должность: кандидат сельскохозяйственных наук
  • Аффилиация: Федеральный аграрный научный центр Юго-Востока
Конькова Э.А.
  • Должность: кандидат сельскохозяйственных наук
  • Аффилиация: Федеральный аграрный научный центр Юго-Востока
Шутарева Г.И.
  • Должность: кандидат биологических наук
  • Аффилиация: Федеральный аграрный научный центр Юго-Востока
Зеленева Ю.В.
  • Должность: доктор биологических наук
  • Аффилиация: Всероссийский научно-исследовательский институт защиты растений
Том/ Выпуск
Том / Номер выпуска 4
Страницы
3-8
Аннотация
Исследования проводили в 2021–2023 гг. в Саратовской и Ленинградской областях с целью выявления устойчивых к комплексу листостебельных болезней образцов яровой твердой пшеницы, несущих рецессивный аллель tsn1, для последующего использования в селекционных программах. В работе исследовали 16 образцов яровой твердой пшеницы. Устойчивость растений оценивали по типу реакции (балл) и степени поражения (%) возбудителями бурой и стеблевой ржавчин, а также септориозов. Наибольший интерес для селекции представляют сорта пшеницы Аннушка (Puccinia triticina – балл 1…2 (тип реакции MR), Р. graminis – 2 балла (MR), Parastagonospora nodorum – степень поражения 12 % (R), P. pseudonodorum – 10 % (RR), Septoria triticicola – 20 % (R)), Гала (P. triticina – 2 балла (MR), Р. graminis – 2 балла (MR), P. nodorum – 20 % (R), P. pseudonodorum – 10 % (RR)), Елизаветинская (P. triticina – 2 балла (MR), Zymoseptoria tritici – 20 % (R), P. nodorum – 10 % (RR), P. pseudonodorum – 16 % (R)), Луч 25 (P. triticina – 1…2 балла (MR), Р. graminis – 2 балла (MR), S. triticicola – 16 % (R)), Ник (P. triticina – 2 балла (MR), P. pseudonodorum – 16 % (R)), Саратовская золотистая, Памяти Васильчука, Тамара (P. triticina – соответственно 1 балл (R); 1…2 балла (MR); 1…2 балла (MR), Р. graminis (все по 2 балла (MR)) и Николаша (Р. graminis – 2 балла (MR), P. nodorum – 16 % (R)). Молекулярный скрининг выявил наличие рецессивн ого аллеля tsn1, обусловливающего устойчивость к токсину SnToxA грибов P. nodorum и P. pseudonodorum, у сортов Саратовская золотистая, Валентина, Аннушка, Луч 25, Памяти Васильчука, Тамара и Гала.
Ключевые слова
пшеница () бурая ржавчина стеблевая ржавчина септориоз Array Array Tsn1 ПЦР
Дата публикации
01.04.2025
Год выхода
2025
Всего подписок
0
Всего просмотров
39

Библиография

  1. 1. Экологическая адаптивность сортов яровой твердой пшеницы (Triticum durum Desf.) саратовской селекции / С. Н. Гапонов, Г. И. Шутарева, Н. М. Цетва и др. // Труды по прикладной ботанике, генетике и селекции. 2024. № 185(1). С. 184–190. doi: 10.30901/2227 8834 2.
  2. 2. Evaluation of wheat cultivars growing in Kazakhstan and Russia for resistance to tan spot / A. Kokhmetova, O. Kremneva, G. Volkova, et al. // J Plant Pathology. 2017. Vol. 99. No. 1. P. 161–167. doi.org:/10.4454/jpp.v99i1.3812.
  3. 3. Устойчивость перспективных образцов яровой твердой пшеницы к листостебельным болезням / А. С. Рсалиев, Е. И. Гультяева, П. Н. Мальчиков и др. // Вестник защиты растений. 2020. № 203(2). С. 105–112. doi: 10.31993/2308 6459 2020 103 2 13334.
  4. 4. Zeleneva Yu. V., Konkova E. А. Soft wheat cultivars grown in the Saratov region and their resistance to Septoria blotch // Vavilovskii Zhurnal Genetiki i Selektsii = Vavilov Journal of Genetics and Breeding. 2023. Vol. 27. No. 6. P. 582–590. doi: 10.18699/VJGB 23 70.
  5. 5. Характеристика перспективных сортов пшеницы (Triticum aestivum L.), допущенных к возделыванию в Нижневолжском регионе, по устойчивости к возбудителям пиренофорозной и темно-­бурой пятнистости / Э. А. Конькова, С. В. Лящева, Ю. В. Зеленева и др. // Сельскохозяйственная биология. 2023. № 58(5). С. 852–863. doi: 10.15389/agrobiology.2023.5.852rus.
  6. 6. Fernandez M. R., Knox R. E. Diseases of durum whea. In: Durum wheat (2nd edn) // Chemistry and Technology. 2012. No. 1. P. 57–71.
  7. 7. Сибикеев С. Н, Конькова Э. А., Салмова М. Ф. Характеристика вирулентности возбудителя бурой ржавчины мягкой пшеницы в условиях Саратовской области // Аграрный научный журнал. 2020. № 9. С. 40–44. doi: 10.28983/asj.y2020i9pp40 44.
  8. 8. Prebreeding studies of leaf rust resistant Triticum aestivum/T. timopheevii line L624 / S. N. Sibikeev, I. G. Adonina, A. E. Druzhin, et al. // Vavilovskii Zhurnal Genetiki i Selektsii = Vavilov Journal of Genetics and Breeding. 2023. Vol. 27. No. 6. P. 623–632. doi: 10.18699/VJGB 23 73.
  9. 9. Твердая (тургидная) озимая пшеница в Ростовской области (сортовой состав, технология возделывания, семеноводство) / Н. Е. Самофалова, А. С. Попов, Н. П. Иличкина и др. Ростов-на-­Дону: ЗАО «Книга», 2012. 80 с.
  10. 10. Иммунитет, адаптивность и качество сортов яровой твердой пшеницы в Среднем Поволжье / М. В. Беляева, П. Н. Мальчиков, М. Г. Мясникова и др. // Известия Самарской Государственной Сельскохозяйственной Академии. 2018. № 4. С. 27–36.
  11. 11. Создание сортов яровой твердой пшеницы, устойчивых к стеблевой ржавчине в Западной Сибири / В. С. Юсов, М. Г. Евдокимов, Л. В. Мешков и др. // Труды по прикладной ботанике, генетике и селекции. 2021. № 182(2). С. 131–138. doi: 10.30901/2227 8834 ­2021 2 131 138.
  12. 12. Evaluation of resistance of spring durum wheat germplasm from Russia and Kazakhstan to fungal foliar pathogens / E. Gultyaeva, V. Yusov, M. Rosova, et al. // Cereal Research Communications. 2020. Vol. 48. No. 2. P. 71–79. doi: 10.1007/s42976 019 00009.
  13. 13. Сибикеев С. Н., Баранова О. А., Дружин А. Е. Пребридинговое изучение интрогрессивных линий яровой мягкой пшеницы, несущих комбинации Sr22+Sr25 и Sr35+Sr25 генов устойчивости к стеблевой ржавчине // Вавиловский журнал генетики и селекции. 2021. № 25(7). C. 713–722. doi: 10.18699/­VJ21.081.
  14. 14. Evaluation of Resistance to Stem Rust and Identification of Sr Genes in Russian Spring and Winter Wheat Cultivars in the Volga Region / O. Baranova, V. Solyanikova, E. Kyrova, et al. // Agriculture. 2023. Vol. 13. No. 3. Article 635. URL: https://www.mdpi.com/2077-0472/13/3/635 (дата обращения: 06.05.2025) doi: 10.3390/agriculture13030635.
  15. 15. Волкова Г. В., Кудинова О. А., Мирошниченко О. О. Стеблевая ржавчина – особо опасное заболевание пшеницы // Достижение науки и техники АПК. 2020. № 34(1). С. 20–25. doi: 10.24411/0235 2451 2020 ­10104.
  16. 16. Василова Н. З., Асхадуллин Дам. Ф. Эпифитотия стеблевой ржавчины на яровой пшенице в Татарстане // Защита и карантин растений. 2017. № 2. С. 27–29.
  17. 17. Rsaliyev A. S., Rsaliyev Sh. S. Principal approaches and achievements in studying race composition of wheat, s stem rust // Vavilov Journal of Genetics and Breeding. 2018. Vol. 22. No. 8. P. 967–977. doi: 10.18699/VJ18.439.
  18. 18. Genetic diversity of spring wheat from Kazakhstan and Russia for resistance to stem rust Ug99 / V. Shamanin, E. Salina, R. Wanyera, et al. // Euphytica. 2016. Vol. 212. No. 2. P. 287–296. doi: 10.1007/s10681 016 1769 0.
  19. 19. Вероятная угроза распространения расы UG99 Puccinia graminis f. sP. Tritici пшеницы на Юго-­Востоке России / С. Н. Сибикеев, Т. С. Маркелова, Э. А. Баукенова и др. // Российская сельскохозяйственная наука. 2016. № 1. С. 18–20.
  20. 20. Видовой состав возбудителей септориозов пшеницы в европейской части России и идентификация генов-­эффекторов SnToxA, SnTox1 и SnTox3 / Ю. В. Зеленева, И. Б. Аблова, В. П. Судникова и др. // Микология и фитопатология. 2022. № 56(6). С. 441–447. doi: 10.31857/S0026364822060113.
  21. 21. Коломиец Т. М., Пахолкова Е. В., Дубовая Л. П. Отбор исходного материала для создания сортов пшеницы с длительной устойчивостью к септориозу (рекомендации). М.: Печатный город, 2017. 56 с.
  22. 22. Roelfs A., Singh R., Saari E. Rust diseases of wheat: concepts and methods of disease management. Mexico, D.F.: CIMMYT, 1992. 81 p.
  23. 23. Peterson R. F., Campbell A. B., Hannah A. E. A diagrammatic scale for estimating rust intensity on leaves and stems of cereals // Canad J Res. 1948. Vol. 26. No. 5. P. 496–500. doi: 10.1139/cjr48c 033.
  24. 24. Mains E. B., Jackson H. S. Physiologic specialization in the leaf rust of wheat Puccinia triticina Erikss // Phytopathology. 1926. Vol. 16. No. 2. P. 89–120.
  25. 25. Stakman E. C., Stewart D. M., Loegering W. Q. Identification of physiologic races of Puccinia graminis var. tritici // United States Department of Agriculture, Agricultural Research Service. 1962. No. 617. P. 53. URL: chrome-­extension://efaidnbmnnnibpcajpcglclefindmkaj/https://www.ars.usda.gov/ARSUserFiles/50620500/Cerealrusts/Pgt/Stakman_code_Pgt.pdf (дата обращения: 06.05.2025).
  26. 26. Saari E. E., Prescott J. M. A scale for appraising the foliar intensity of wheat diseases // Plant Dis ReP. 1975. No. 59. P. 377–380.
  27. 27. Пыжикова Г. В., Карасева Е. В. Методика изучения возбудителей септориоза на изолированных листьях пшеницы // Сельскохозяйственная биология. 1985. № 12. С. 112–114.
  28. 28. Методы оценки устойчивости селекционного материала и сортов пшеницы к септориозу: метод. указ. / Г. В. Пыжикова, А. А. Санина, Л. М. Супрун и др. М.: ВНИИ фитопатологии, 1989. 43 с.
  29. 29. Молекулярная идентификация, гены-эффекторы и вирулентность изолятов гриба Parastagonospora nodorum из Алтайского края (Россия) / Ю. В. Зеленева, Ф. Б. Ганнибал, И. А. Казарцев и др. // Mycology and phytopathology. 2023. No. 57(5). P. 362–371. doi: 10.31857/S0026364823050124.
  30. 30. Kovalenko N. M., Zeleneva Yu. V., Sudnikova V. P.Characterization of Pyrenophoratritici-­repentis, Parastagonospora nodorum and Parastagonospora pseudonodorum populations in the Tambov region territory based on the presence of effector genes // Russian Agricultural Sciences. 2023. No. 2. P. 20–25. doi: 10.31857/S2500262723020114.
  31. 31. Устойчивость сортов и линий яровой мягкой пшеницы к возбудителям септориозной, пиренофорозной и темно-­бурой пятнистостей / Ю. В. Зеленева, В. П. Судникова, Н. М. Коваленко и др. // Труды по прикладной ботанике, генетике и селекции. 2023. № 184(3) C. 96–206. doi: 10.30901/2227 8834 2023 3 196 206.
  32. 32. Doyle J. J., Doyle J. L. Isolation of plant DNA from fresh tissue // Focus. 1990. Vol. 12. No. 1. P. 13–15.
  33. 33. A unique wheat disease resistance-like gene governs effector-­triggered susceptibility to necrotrophic pathogens / J. D. Faris, Z. Zhang, H. Lu, et al. // Proc. Natl. Acad Sci. 2010. Vol. 107. P. 13544–13549. doi: 10.1073/pnas.1004090107.
  34. 34. Характеристика перспективных сортов пшеницы (Triticum aestivum L.), допущенных к возделыванию в Нижневолжском регионе, по устойчивости к возбудителям пиренофорозной и темнобурой пятнистости / Э. А. Конькова, С. В. Лящева, Ю. В. Зеленева и др. // Сельскохозяйственная биология. 2023. № 28(5). С. 852-863. doi: 10.15389/agrobiology.2023.5.852rus
  35. 35. Мироненко Н. В., Баранова О. А., Коваленко Н. М. Роль полового процесса в сохранении чужеродной транслокации гена TохА в геноме Pyrenophora tritici-­repentis // Микология и фитопатология. 2019. № 53(2). С. 115–123. doi: 10.1134/S0026364819020077.
  36. 36. Genetic analysis of wheat sensitivity to the ToxB fungal effector from Pyrenophoratritici-­repentis, the causal agent of tan spot / B. Corsi, L. Percival-­Alwyn, R. C. Downie, et al. // Theoretical and Applied Genetics. 2020. No. 133. P. 935–950. doi: 10.1007/s00122 019 03517 8.
  37. 37. The pangenome of the wheat pathogen Pyrenophora tritici-­repentis reveals novel transposons associated with necrotrophic effectors ToxA and ToxB / R. Gourlie, M. McDonald, M. Hafez, et al. // BMC Biology. 2022. Vol. 20. No. 1. Article 239. URL: https://bmcbiol.biomedcentral.com/articles/10.1186/s12915-022-01433 w#citeas (дата обращения: 06.05.2025). doi: 10.1186/s12915 ­­022 01433 w.
QR
Перевести

Индексирование

Scopus

Scopus

Scopus

Crossref

Scopus

Высшая аттестационная комиссия

При Министерстве образования и науки Российской Федерации

Scopus

Научная электронная библиотека