Везде

ОСХН Российская сельскохозяйственная наука Russian Agricultural Sciences

  • ISSN (Print) 2500-2627
  • ISSN (Online) 3034-5820

ПОЛИФЕНОЛЬНЫЙ КОМПЛЕКС НАИБОЛЕЕ АДАПТИРОВАННЫХ К УСЛОВИЯМ ЮГА ДАЛЬНЕГО ВОСТОКА РОССИИ СОРТОВ СЛИВЫ: ИДЕНТИФИКАЦИЯ МЕТОДОМ ТАНДЕМНОЙ МАСС-СПЕКТРОМЕТРИИ

Вы можете
Код статьи
S3034582025050074-1
DOI
10.7868/S3034582025050074
Тип публикации
Статья
Статус публикации
Опубликовано
Авторы
Разгонова М.П.
  • Аффилиация:
    Федеральный исследовательский центр Всероссийский институт генетических ресурсов растений им. Н.И.Вавилова (ВИР)
    Дальневосточный федеральный университет, Передовая инженерная школа «Институт биотехнологий, биоинженерии и пищевых систем»
Кирин В.С.
  • Аффилиация: Федеральный исследовательский центр Всероссийский институт генетических ресурсов растений им. Н.И.Вавилова (ВИР)
Сабитов А.Ш.
  • Аффилиация: Федеральный исследовательский центр Всероссийский институт генетических ресурсов растений им. Н.И.Вавилова (ВИР)
Тихонова Н.Г.
  • Аффилиация: Федеральный исследовательский центр Всероссийский институт генетических ресурсов растений им. Н.И.Вавилова (ВИР)
Голохваст К.С.
  • Аффилиация:
    Сибирский федеральный научный центр агробиотехнологий РАН
    Томский государственный университет, Высшая инженерная школа агробиотехнологии
Том/ Выпуск
Том / Номер выпуска 5
Страницы
34-43
Аннотация
Исследования проводили с целью выделения и идентификации комплекса биоактивных соединений, включая полифенолы, из экстрактов мякоти плодов сливы для оценки их потенциала как источника биологически активных веществ. В качестве растительного материала использовали созревшие плоды сортов сливы Красномясая, Непоражаемая, Long Yuan Mi Li, Long Yuan Tao Li, собранные в конце июля 2023 г. в Приморском крае. Для создания высококонцентрированных экстрактов проводили фракционную мацерацию: семидневное настаивание мякоти в темном помещении при комнатной температуре с тремя повторными экстракциями для каждого образца. Масс-спектрометрический анализ осуществляли на ионной ловушке с источником электрораспыления (положительные и отрицательные ионы), разделяя многокомпонентные смеси на жидкостном хроматографе Shimadzu LC‑20 Prominence HPLC с УФ-детектором и обращенно-фазовой колонкой Shodex ODP‑40 4E. Использовали градиентный режим перехода от воды к ацетонитрилу: 0…4 мин. (0% ацетонитрила), 4…60 мин. (25% ацетонитрила), 60…75 мин. (100% ацетонитрила), 75…120 мин. (100% ацетонитрила). Масс-спектры регистрировали в диапазоне m/z 100…1700 с фрагментацией до 4‑го порядка. Всего в результате масс-спектрометрических экспериментов идентифицировано 74 химических соединения, из которых 52 соединения отнесены к классу полифенолов. Идентифицирована большая группа антоцианинов и катехинов, что указывает на высокие антиоксидантные свойства исследуемых растительных матриц. Впервые в мякоти плодов PrunusL. выделены полифенольные соединения ибупрофен, флоретин, умбеллиферон, метилгалловая кислота, дигидрокемпферол, гербацетин, гексозид умбеллиферона, п-кумароилхинная кислота. Результаты исследований свидетельствуют о высокой перспективности плодов изучаемых сортов сливы как объекта для поиска биологически активных веществ полифенольного характера, потенциально пригодных для создания новых лекарственных препаратов и добавок.
Ключевые слова
слива Array Array Array тандемная масс-спектрометрия Дальневосточный регион фенолы полифенольные соединения
Дата публикации
01.05.2025
Год выхода
2025
Всего подписок
0
Всего просмотров
39

Библиография

  1. 1. An Overview of the Phytochemical Composition of Different Organs of Prunus Spinosa L., Their Health Benefits and Application in Food Industry / M.F. Bei, A. I. Apahidean, R. Budau, et al. // Horticulturae. 2024. No. 10. Article 29. URL: https://www.mdpi.com/2311-7524/10/1/29 (дата обращения: 01.02.2025). doi: 10.3390/horticulturae10010029.
  2. 2. ВитковскийВ.Л.Плодовые Растения Мира. СанктПетербург: Издательство «Лань», 2003. 591 c.
  3. 3. Казьмин Г. Т. Селекция зимостойких сортов косточковых культур на Дальнем Восток // Доклады советских ученых к XIX Международному конгрессу по садоводству (Варшава, ПНР). Москва, 1974. С. 97–100.
  4. 4. Царенко В. П., Царенко Н. А. Слива на Дальнем Востоке России. Владивосток: Морской государственный университет, 2014. 187 с.
  5. 5. Soluble Sugar, Organic Acid and Phenolic Composition and Flavor Evaluation of Plum Fruits / Q. Xiao, S. Ye, H. Wang, et al. // Food Chem. 2024. No. 24. Article 101790. URL: https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S2590157524006783 (дата обращения: 01.02.2025). doi: 10.1016/j.fochx.2024.101790.
  6. 6. MileticN.Phenolic Content and Antioxidant Capacity of Fruits of Plum Cv. ’Stanley’ (Prunus DomesticaL.) as Influenced by Maturity Stage and on-Tree Ripening // Aust J Crop Sci. 2012. No. 6. C. 681–687.
  7. 7. Оценка сортов и гибридных форм сливы как источника биологически активных веществ / М.А.Макаркина, О.А. Ветрова, А.А. Гуляева и др. // Вестник Курской государственной сельскохозяйственной академии.2019. № 5. C. 69–74.
  8. 8. Study of the antioxidant complex of plum fruits Prunus ussuriensis and Prunus insititia in the Sverdlovsk region / A. V. Arisov, A. V. Vyatkin, M. G. Isakova, et al. // Chemistry of plant raw material. 2023. No. 4. P. 353–360.
  9. 9. Акимов М. Ю. Биологическая Ценность Плодов и Ягод Российского Производства // Вопросы питания. 2020. № 89. C. 220–232. doi: 10.24411/0042‑8833‑2020‑10055.
  10. 10. Сафонова И.А., ЯцюкВ.Я. Изучение фенольных соединений листьев сливы колючей (Prunus spinosa L.) методом высокоэффективной жидкостной хроматографии. // Научные ведомости. Серия Медицина. Фармация. 2011. № 4 (99). Вып. 13. С. 165–169.
  11. 11. Identification of Chemopreventive Components from Halophytes Belonging to Aizoaceae and Cactaceae Through LC/MS–Bioassay Guided Approach / A.R.Hamed, S.S.El-Hawary, R.M.Ibrahim, et al. // J.Chromatogr. Sci. 2021. No. 59. P. 618–626. doi: 10.1093/chromsci/bmaa112.
  12. 12. Colonic Fermentation of Polyphenols from Chilean Currants (Ribes Spp.) and Its Effect on Antioxidant Capacity and Metabolic Syndrome-Associated Enzymes / A. Burgos-Edwards, F. Jiménez-Aspee, C. Theoduloz, et al. // Food Chem. 2018. No. 258. P. 144–155. doi: 10.1016/j.foodchem.2018.03.053.
  13. 13. Anthocyanin Profiles in South Patagonian Wild Berries by HPLC-DAD-ESI-MS/MS / A. Ruiz, I. HermosínGutiérrez, C. Vergara, et al. // Food Research International. 2013. No. 51. P. 706–713. doi: 10.1016/j.foodres.2013.01.043.
  14. 14. Genus Ribes: Ribes Aureum, Ribes Pauciflorum, Ribes Triste, and Ribes Dikuscha – Comparative Mass Spectrometric Study of Polyphenolic Composition and Other Bioactive Constituents / M. P. Razgonova, M. A. Nawaz, A. S.Sabitov, et al. // Int. J.Mol. Sci. 2024. No. 25. Article 10085. URL: https://www.mdpi.com/1422-0067/25/18/10085 (дата обращения: 01.02.2025). doi: 10.3390/ijms251810085.
  15. 15. Полифенольные Соединения Голубики (Vaccinium Uliginosum L.) Из Магаданской Экспедиции, Идентифицированные Методом Тандемной МассСпектрометрии / M. П. Разгонова, А. Ш. Сабитов, О.В.Кульчина и др. // Сибирский вестник сельскохозяйственной науки. 2024. № 54. C. 23–38. doi: 10.26898/0370‑8799‑2024‑11‑3.
  16. 16. Rapid Qualitative Profiling and Quantitative Analysis of Phenolics in Ribes Meyeri Leaves and Their Antioxidant and Antidiabetic Activities by HPLC‐QTOF‐MS/MS and UHPLC‐MS/MS / Y. Zhao, H. Lu, Q. Wang, et al. // J.Sep. Sci. 2021. No. 44. P. 1404–1420. doi: 10.1002/jssc.202000962.
  17. 17. Comparison of Multiple Bioactive Constituents in the Flower and the Caulis of Lonicera Japonica Based on UFLC-QTRAP-MS/MS Combined with Multivariate Statistical Analysis / Z. Cai, C. Wang, L.Zou, et al. // Molecules. 2019. No. 24. Article 1936. URL: https://www.mdpi.com/1420-3049/24/10/1936 (дата обращения: 01.02.2025). doi: 10.3390/molecules24101936.
  18. 18. Identification of Key Metabolites Based on Non-Targeted Metabolomics and Chemometrics Analyses Provides Insights into Bitterness in Kucha [Camellia Kucha (Chang et Wang) Chang]. / D. Qin, Q. Wang, H. Li, et al. // Food Research International. 2020. No. 138. Article 109789. URL: https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S0963996920308140?via%3Dihub (дата обращения: 01.02.2025). doi: 10.1016/j.foodres.2020.109789.
  19. 19. Identification and Characterization of Major Constituents in Juglans Mandshurica Using Ultra Performance Liquid Chromatography Coupled with Time-of-Flight Mass Spectrometry (UPLC-ESI-Q-TOF/MS) / J.-H. Huo, X.-W. Du, G.-D. Sun, et al. // Chin. J.Nat. Med. 2018. No. 16. P. 525–545. doi: 10.1016/j.foodres.2020.109789.
  20. 20. Andean Blueberry of the Genus Disterigma: A HighResolution Mass Spectrometric Approach for the Comprehensive Characterization of Phenolic Compounds / S. Aita, A. Capriotti, C. Cavaliere, et al. // Separations. 2021. No. 8. Article 58. URL: https://www.mdpi.com/2297-8739/8/5/58 (дата обращения: 01.02.2025). doi: 10.3390/separations8050058.
  21. 21. Global Metabolome Profiles of Lonicera CaeruleaL. and Lonicera Caerulea Ssp. Kamtschatica (Sevast.) Gladkova / M.A.Nawaz, M.P.Razgonova, E.A.Rusakova, et al. // Turkish Journal of Agriculture and Forestry. 2024. No. 48. P. 745–759. doi: 10.55730/1300‑011X.3216.
  22. 22. The Global Metabolome Profiles of Four Varieties of Caerulea, Established via Tandem Mass Spectrometry / M.P.Razgonova, M.A.Navaz, A.S.Sabitov, et al. // Horticulturae. 2023. No. 9. Article 1188. URL: https://www.mdpi.com/2311-7524/9/11/1188 (дата обращения: 01.02.2025). doi: 10.3390/horticulturae9111188.
  23. 23. Zostera Marina L.: Supercritical CO2-Extraction and Mass Spectrometric Characterization of Chemical Constituents Recovered from Seagrass / M.P.Razgonova, L.A.Tekutyeva, A.B.Podvolotskaya, et al. // Separations. 2022. No. 9. Article 182. URL: https://www.mdpi.com/2297–8739/9/7/182 (дата обращения: 01.02.2025). doi: 10.3390/separations9070182.
  24. 24. HPLC-DAD-ESI-MS/MS Screening of Bioactive Components from Rhus Coriaria L. (Sumac) Fruits / I.M.Abu-Reidah, M.S.Ali-Shtayeh, R.M.Jamous, et al. // Food Chem. 2015. No. 166. P. 179–191. doi: 10.1016/j.foodchem.2014.06.011.
  25. 25. Differences in the Metabolic Profiles and Antioxidant Activities of Wild and Cultivated Black Soybeans Evaluated by Correlation Analysis / J.L.Xu, J.-S. Shin, S.-K. Park, et al. // Food Research International. 2017. No. 100. P. 166–174. doi: 10.1016/j.foodres.2017.08.026.
  26. 26. Metabolomic Analysis Reveals Domestication-Driven Reshaping of Polyphenolic Antioxidants in Soybean Seeds / X.Li, S. Li, J. Wang, et al. // Antioxidants. 2023. No. 12. Article 912. https://www.mdpi.com/2076-3921/12/4/912 (дата обращения: 01.02.2025). doi: 10.3390/antiox12040912.
  27. 27. Tentative Characterization of Polyphenolic Compounds in the Male Flowers of Phoenix Dactylifera by Liquid Chromatography Coupled with Mass Spectrometry and DFT / R.B.Said, A.I.Hamed, U.A.Mahalel, et al. // Int. J. Mol. Sci. 2017. No. 18. Article 512. URL: https://www.mdpi.com/1422-0067/18/3/512 (дата обращения: 01.02.2025). doi: 10.3390/ijms18030512.
  28. 28. Isolation and Quantification of Diarylheptanoids from European Hornbeam (Carpinus BetulusL.) and HPLCESI–MS/MS Characterization of Its Antioxidative Phenolics / C. A. Felegyi-Tóth, Z. Garádi, A. Darcsi, et al. // J.Pharm. Biomed. Anal. 2022. No. 210. Article 114554. URL: https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S0731708521006658 (дата обращения: 01.02.2025). doi: 10.1016/j.jpba.2021.114554.
  29. 29. Spinola V., Pinto J., Castilho P. C. Identification and Quantification of Phenolic Compounds of Selected Fruits from Madeira Island by HPLC-DAD-ESI-MSn and Screening for Their Antioxidant Activity // Food Chem. 2015. No. 173. P. 14–30. doi: 10.1016/j.jpba.2021.114554.
  30. 30. Rare Plant of Central Yakutia Polygala Sibirica L.: Phytochemical Profile and In Vitro Morphogenic Culture / Zh. M. Okhlopkova, M. P. Razgonova, E. V. Kucharova, et al. // Russian Journal of Plant Physiology. 2023. No. 70. Article 176. URL: https://link.springer.com/article/10.1134/S1021443723603099 (дата обращения: 01.02.2025). doi: 10.1134/S1021443723603099.
  31. 31. Antioxidant, Antimicrobial Activities and Characterization of Polyphenol-Enriched Extract of Egyptian Celery (Apium Graveolens L., Apiaceae) Aerial Parts via UPLC/ESI/TOF-MS / A. M. Emad, D. M. Rasheed, R.F. El-Kased, et al. // Molecules. 2022. No. 27. Article 698. URL: https://www.mdpi.com/1420-3049/27/3/698 (дата обращения: 01.02.2025). doi: 10.3390/molecules27030698.
  32. 32. Characterization of Carotenoid Profiles in Goldenberry (Physalis Peruviana L.) Fruits at Various Ripening Stages and in Different Plant Tissues by HPLC-DADAPCI-MS / L.Etzbach, A.Pfeiffer, F.Weber, et al. // Food Chem. 2018. No. 245. P. 508–517. doi: 10.1016/j.foodchem.2017.10.120.
  33. 33. Physiological and Metabolomics Analyses of Young and Old Leaves from Wild and Cultivated Soybean Seedlings under Low-Nitrogen Conditions / Y. Liu, M. Li, J. Xu, et al. // BMC Plant Biol. 2019. No. 19. Article 389. URL: https://link.springer.com/article/10.1186/s12870-019-2005-6 (дата обращения: 01.02.2025). doi: 10.1186/s12870‑019‑2005‑6.
  34. 34. Rosa Davurica Pall., Rosa Rugosa Thumb., and Rosa Acicularis Lindl. Originating from Far Eastern Russia: Screening of 146 Chemical Constituents in Three Species of the Genus Rosa / M. P.Razgonova, B.A. Bazhenova, Y. Yu. Zabalueva, et al. // Applied Sciences. 2022. No. 12. Article 9401. URL: https://www.mdpi.com/2076-3417/12/19/9401 (дата обращения: 21.02.2025). doi: 10.3390/app12199401.
  35. 35. Polyphenol and Glycoalkaloid Contents in Potato Cultivars Grown in Luxembourg / H. Deußer, C. Guignard, L. Hoffmann, et al. // Food Chem. 2012. No. 135. P. 2814–2824. doi: 10.1016/j.foodchem.2012.07.028.
  36. 36. ShakyaR., NavarreD.A. LC–MS Analysis of Solanidane Glycoalkaloid Diversity among Tubers of Four Wild Potato Species and Three Cultivars (Solanum Tuberosum) // J. Agric. Food Chem. 2008. No. 56. P. 6949–6958. doi: 10.1021/jf8006618.
  37. 37. HossainM., BruntonN., RaiD.Effect of Drying Methods on the Steroidal Alkaloid Content of Potato Peels, Shoots and Berries // Molecules. 2016. No. 21. Article 403. URL: https://www.mdpi.com/1420-3049/21/4/403 (дата обращения: 21.02.2025). doi: 10.3390/molecules21040403.
  38. 38. A Comprehensive Review of Herbacetin: From Chemistry to Pharmacological Activities / X. Wei, Z. Zhao, R. Zhong, et al. // J. Ethnopharmacol. 2021. No. 279. Article 114356. URL: https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S0378874121005857 (дата обращения: 21.02.2025). doi: 10.1016/j.jep.2021.114356.
  39. 39. Discovery of Herbacetin as a Novel SGK1 Inhibitor to Alleviate Myocardial Hypertrophy / S. Zhang, Y.Wang, M. Yu, et al. // Advanced Science. 2022. Article 9. URL: https://advanced.onlinelibrary.wiley.com/doi/abs/10.1002/advs.202101485 (дата обращения: 21.02.2025). doi: 10.1002/advs.202101485.
  40. 40. Characterization of Metabolite Profiles of Leaves of Bilberry (Vaccinium Myrtillus L.) and Lingonberry (Vaccinium Vitis-Idaea L.) / P. Liu, A. Lindstedt, N.Markkinen, et al. // J.Agric. Food Chem. 2014. No. 62. P. 12015–12026. doi: 10.1021/jf503521m.
  41. 41. Bernatoniene J., Kopustinskiene D. M. The Role of Catechins in Cellular Responses to Oxidative Stress // Molecules. 2018. No. 23. Article 965. URL: https://www.mdpi.com/1420–3049/23/4/965 (дата обращения: 21.02.2025). doi: 10.3390/molecules23040965.
QR
Перевести

Индексирование

Scopus

Scopus

Scopus

Crossref

Scopus

Высшая аттестационная комиссия

При Министерстве образования и науки Российской Федерации

Scopus

Научная электронная библиотека