- Код статьи
- 10.31857/S2500262723010039-1
- DOI
- 10.31857/S2500262723010039
- Тип публикации
- Статья
- Статус публикации
- Опубликовано
- Авторы
- Том/ Выпуск
- Том / Номер выпуска 1
- Страницы
- 13-19
- Аннотация
- Цель исследования - оценить генетическую стабильность сортов лаванды при длительном клональном микроразмножении с использованием RAPD и ISSR маркеров. Материалом для исследования служили три сорта лаванды узколистной (Lavandula angustifolia Mill.) крымской селекции - Вдала, Синева, Степная. Биологическими объектами были исходные выращенные в фитоблоке донорные растения, а также микропобеги после 6 и 16 субкультивирований при размножении in vitro. В работе использовали 2 RAPD (OPA 10, OPO 13) и 4 ISSR праймера (HB 13, HB 15, ISSR 1, ISSR 2, ISSR 3). У изученных сортов по основным морфометрическим параметрам развития эксплантов (количество и длина побегов, число узлов на побеге и коэффициент размножения) достоверных различий после 6 и 16 субкультивирований не выявлено. По морфологии микропобеги всех изученных сортов после разных сроков культивирования между собой так же не отличались. С использованием 7 маркеров идентифицировано наличие 62 локусов. Все праймеры, используемые в работе, были полиморфны (41,7…88,9 %), а продукты амплификации надежно идентифицировали выбранные для исследования сорта лаванды. Длина амплифицированных фрагментов варьировала от 378 до 2177 пар нуклеотидов. Микропобеги, полученные при использовании клонального микроразмножения после 6 и 16 субкультивирований, по генетическому профилю оказались идентичными исходным сортам лаванды. В результате показана возможность длительного (как минимум, в течение 16 субкультивирований) клонального микроразмножения сортов лаванды узколистной при сохранении их генетической стабильности.
- Ключевые слова
- лаванда узколистная микроразмножение in vitro субкультивирование генетическая стабильность ISSR анализ
- Дата публикации
- 16.09.2025
- Год выхода
- 2025
- Всего подписок
- 0
- Всего просмотров
- 11
Библиография
- 1. Эфирные масла и их качество / В. С. Паштецкий, Л. А. Тимашева, О. А. Пехова и др. Симферополь: ИТ "АРИАЛ", 2021. 212 с.
- 2. The chromosome-based lavender genome provides new insights into Lamiaceae evolution and terpenoid biosynthesis /j. Li, Y. Wang, Y. Dong, et al. // Horticulture Research. 2021. Vol. 8. Article 53. URL: https://academic.oup.com/hr/article/doi/10.1038/s41438-021-00490-6/6446685 (дата обрашения: 1.06.2022). doi: 10.1038/s41438-021-00490-6.
- 3. Hamza A., El-Kafie O. A., Kasem M. Direct micropropagation of english lavender (Lavandula angustifolia Munstead) plant // Journal of Plant Production. 2011. Vol. 2. No. 1. P. 81-96. doi: 10.21608/jpp.2011.85464.
- 4. Morphogenetic, Physiological, and Biochemical Features of Lavandula angustifolia at Long-Term Micropropagation In Vitro / N. A. Yegorova, I. V. Mitrofanova, V. A. Brailko, et al. // Russian Journal of Plant Physiology. 2019. Vol. 66. No. 2. P. 326-334. doi: 10.1134/S1021443719010060.
- 5. Rapid and efficient protocol for clonal propagation of phenolic-rich Lavandula multifida / M. Zuzarte, A. M. Dinis, L. Salgueiro, et al. //j. of Agricultural Science. 2015. Vol. 7. No. 3. P. 8-17. doi:10.5539/jas.v7n3p8.
- 6. Micropropagation of lavender: a protocol for production of plantlets //j. Koefender, C. E. Manfio, J. N. Camera, et al. // Horticultura Brasileira. 2021. No. 39. P. 404-410. doi: 10.1590/s0102-0536-20210409.
- 7. Some morphophysiological features of lavander cultivar micropropagated in vitro by meristem culture / N. Yegorova, V. Brailko, I. Stavtzeva, et al. // Agriculture & Forestry. 2018. Vol. 64. No. 1. P. 105-111. doi: 10.17707/AgricultForest.64.1.13.
- 8. Егорова Н. А., Ставцева И. В. Разработка биотехнологических приемов микроразмножения in vitro для Lavandula angustifolia Mill. // Труды Кубанского государственного аграрного университета. 2015. № 54. С. 138-142.
- 9. Егорова Н. А. Биотехнология эфиромасличных растений: создание новых форм и микроразмножение in vitro: монография. Симферополь: Издательский дом "Автограф" (Екатеринбург), 2021. 315 с.
- 10. Micropropagation of Lavandula angustifolia Mill. ‘Record' and ‘Belyanka' / I. V. Mitrofanova, S. N. Chirkov, N. P. Lesnikova-Sedoshenko, et al. // Acta Hortic. 2017. Vol. 1187. P. 37-42. doi: 10.17660/ActaHortic.2017.1187.4.
- 11. Kara N., Baydar H. Effects of different explant sources on micropropagation in Lavender (Lavandula sp.) // Journal of Essential Oil Bearing Plants. 2012. Vol. 15. No. 2. P. 250-255.
- 12. Применение биотехнологических методов в оздоровлении растений и размножении безвирусного посадочного материала перспективных цветочно-декоративных культур / О. В. Митрофанова, И. В. Митрофанова, Н. П. Лесникова-Седошенко и др. // Сборник научных трудов ГНБС. 2014. Т. 138. С. 5-56.
- 13. Cardoso J.C., Gerald L.T.S., Teixeira da Silva J.A. Micropropagation in the Twenty-First Century. In: Plant cell culture protocols (4th edition) / eds.: V.M. Loyola-Vargas, N. Ochoa-Alejo. New York: Humana Press, 2018. P. 17-46.
- 14. Teixeira da Silva J. A., Bolibok H., Rakoczy-Trojanowska M. Molecular markers in micropropagation, tissue culture and in vitro plant research, Genes // Genomes and Genomics. 2007. Vol. 1. No. 1. P. 66-72.
- 15. Butiuc-Keul A., Farkas A., Cristea V. Genetic Stability Assessment of in Vitro Plants by Molecular Markers // Studia universitatis babeş-bolyai biologia. 2016. Vol. LXI. No. 1. P. 107-114.
- 16. Venkatachalam L., Sreedhar RV, Bhagyalakshmi N. Molecular analysis of genetic stability in long-term micropropagated shoots of banana using RAPD and ISSR markers // Electronic Journal of Biotechnology. 2007. Vol. 10 No. 1. P. 106-113. doi: 10.4067/S0717-34582007000100010.
- 17. Технологии выращивания высококачественного посадочного материала плодовых и ягодных растений / Ю. В. Трунов, Ф. В. Соловьев, И. И. Козлова и др. Мичуринск: ООО "БИС", 2018. 246 с.
- 18. Assessment of genetic stability of in vitro grown Dictyospermum ovalifolium / M. Chandrika, S. Thoyajaksha, R Ravishankar, et al. // Biologia Plantarum. 2008. Vol. 52. No. 4. P. 735-739.
- 19. Influence of ventilation closure, gelling agent and explant type on shoot bud proliferation and hyperhydricity in Scrophularia yoshimurae - a medicinal plant / H.-S. Tsay, C.-Y. Lee, D. C. Agrawal, et al. // In Vitro Cellular and Developmental Biology-Plant. 2006. Vol. 42. No. 5. P. 445-449.
- 20. Parab A. R., Lynn C. B., Subramaniam S. Assessment of genetic stability on in vitro and ex vitro plants of Ficus carica var. black jack using ISSR and DAMD markers // Mol Biol Rep. 2021. Vol. 48. No. 11. P. 7223-7231. doi: 10.1007/s11033-021-06714-1.
- 21. Genetic instability of sugarcane plants derived from meristem cultures / M. I. Zucchi, H. Arizono, V. A. Morais, et al. // Genetics and Molecular Biology. 2002. Vol. 25. No. 1. P. 91-96.
- 22. Debnath S. C. Molecular approaches for monitoring clonal fidelity and epigenetic variation in in vitro-derived strawberry plants // Acta Hortic. 2017. Vol. 115. P. 683-687.
- 23. In vitro propagation method for production of morphologically and genetically stable plants of different strawberry cultivars / A. H. Naing, S. H. Kim, M. Y. Chung, et al. // Plant Methods. 2019. Vol. 15. No. 36. URL: https://plantmethods.biomedcentral.com/articles/10.1186/s13007-019-0421-0 (дата обращения: 1.04.2022). doi: 10.1186/s13007-019-0421-0.
- 24. Chograni H., Zaouali Y., Boussaid M. Genetic diversity of natural Tunisian Lavandula multifida L. (Lamiaceae) populations assessed by allozymes and random amplification of polymorphic DNA (RAPD) // African Journal of Biotechnology. 2013. Vol. 12. No. 7. P. 648-657. doi: 10.5897/AJB12.1748.
- 25. Ahmed S. M., Al-Sodany Y. Authentication of Ecological, Biochemical and Molecular Features for Some Lamiaceae Species from Saudi Arabia // Egypt. J. Bot. 2019. Vol. 59. No. 3. P. 581-594. doi: 10.21608/ejbo.2019.6144.1246.
- 26. Peschke V. M., Phillips R. L., Gengenbach B. G. Genetic and molecular analysis of tissue-culture-derived Ac elements // Theor. Appl. Genet. 1991. Vol. 82. P. 121-129.
- 27. Doyle J. J. Isolation of plant DNA from fresh tissue // Focus. 1990. Vol. 12. P. 13-15.
- 28. Загорская М. С. Некоторые аспекты выделения геномной днк из растений лаванды разного происхождения // Современное состояние, проблемы и перспективы развития аграрной науки: материалы V международной научно-практической конференции. Симферополь: Общество с ограниченной ответственностью "Издательство Типография "Ариал", 2020. С. 177-179. doi: 10.33952/2542-0720-2020-5-9-10-90.
- 29. An efficient DNA isolation method for tropical plants / Q. X. Huang, X. C. Wang, H. Kong, et al. // African Journal of Biotechnology. 2013. Vol. 12. No. 19. P. 2727-2732.
- 30. Gadouche L., Saadi A., Zidane A. Molecular polymorphism in dentate lavender from littoral Algerian // Journal Genetics and Biodiversity. 2019. Vol. 3. No. 2. P. 40-48.
- 31. Current protocols in molecular biology / P. M. Ausubel, R. Brent, R. E. Kingston, et al. New York: Wilev, 1997. 630 p.
- 32. Al Khateeb W., Kanaan R., El-Elimat T. In vitro Propagation, Genetic Stability, and Secondary Metabolite Analysis of Wild Lavender (Lavandula coronopifolia Poir.) /// Hortic. Environ. Biotechnol. 2017. Vol. 58. No. 4. P. 393-405. doi: 10.1007/s13580-017-0342-7.
- 33. In vitro propagation, genetic and phytochemical assessment of Thymus persicus - a medicinally important source of pentacyclic triterpenoids / Z. Bakhtiar, M. H. Mirjalili, A. Sonboli, et al. // Biologia. 2014. Vol. 69. P. 594-603. doi: 10.2478/s11756-014-0346-z.
- 34. Ex situ preservation for some endemic and rare medicinal plants in Taif, KSA / Attia O. Attia, El Dessoky S. Dessoky, Yassin M. Al-Sodany, et al. // Biotechnology & Biotechnological Equipment. 2017. Vol. 31. No. 5. P. 912-920. doi: 10.1080 /13102818.2017.1356690.
